細胞內蛋白流式檢測

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注意：因業務調整，暫不接受個人委托測試望見諒。

細胞內蛋白流式檢測技術解析

檢測樣品 細胞內蛋白流式檢測的樣品主要來源于體外培養的細胞系、外周血單核細胞（PBMC）、組織分離的原代細胞或特定疾病模型中的細胞樣本。樣品需經過預處理，包括細胞收集、固定、破膜等步驟，以確保目標蛋白的穩定性和抗體的有效結合。

檢測項目 檢測項目涵蓋多種胞內蛋白，例如：

• 細胞因子（如IL-2、IFN-γ、TNF-α）
• 信號通路蛋白（如磷酸化STAT3、Akt、ERK）
• 功能標志物（如Ki-67、Granzyme B）
• 表觀調控蛋白（如組蛋白修飾蛋白） 此外，還可結合細胞表面標記物（如CD3、CD4、CD8）進行多參數分析，實現細胞亞群的特異性檢測。

檢測方法

1. 細胞固定與破膜：使用含多聚甲醛的固定液穩定細胞結構，隨后以皂苷或Triton X-100破膜，暴露胞內抗原。
2. 抗體孵育：加入熒光標記的一抗或間接標記的二抗，靶向目標蛋白。需優化抗體濃度及孵育時間，減少非特異性結合。
3. 洗滌與重懸：多次離心去除未結合抗體，以PBS或流式緩沖液重懸細胞。
4. 多色熒光方案設計：根據蛋白表達豐度及熒光染料光譜重疊性，選擇兼容的熒光組合（如FITC、PE、APC、BV421）。
5. 對照設置：包括同型對照、未染色對照及陽性/陰性對照，確保結果準確性。

檢測儀器 實驗采用流式細胞儀完成數據采集與分析，常用設備包括：

• BD FACSCanto™ II：配置3激光（488 nm、640 nm、405 nm）和8色檢測通道，支持高通量多參數分析。
• Beckman CytoFLEX LX：具備高靈敏光電倍增管（PMT），適用于低豐度蛋白檢測。
• Attune NxT：聲波聚焦技術提升檢測速度，適合大規模樣本篩選。

數據分析與結果解讀 原始數據通過FlowJo或儀器配套軟件（如BD FACSDiva™）處理。關鍵步驟包括：

1. 設門策略：通過FSC/SSC排除碎片，結合表面標記圈定目標細胞群。
2. 熒光強度統計：以Median Fluorescence Intensity（MFI）或陽性細胞百分比量化蛋白表達水平。
3. 多參數關聯分析：結合不同蛋白表達數據，解析細胞功能狀態或信號通路活性。

技術優勢與應用領域 該技術廣泛用于免疫學研究、腫瘤微環境分析、藥物靶點驗證及臨床診斷。其高靈敏度、單細胞分辨率及多參數檢測能力，為揭示疾病機制及開發精準療法提供重要支持。

注意事項

• 避免細胞過度固定導致抗原表位破壞。
• 胞內蛋白易降解，建議使用蛋白轉運抑制劑（如Brefeldin A）預處理活細胞。
• 多色實驗中需定期校準儀器，補償熒光溢漏。

通過規范化的操作流程與嚴謹的數據分析，細胞內蛋白流式檢測可高效揭示細胞功能與分子調控網絡，成為生命科學研究的核心工具之一。

實驗儀器

測試流程

注意事項

1.具體的試驗周期以工程師告知的為準。

2.文章中的圖片或者標準以及具體的試驗方案僅供參考，因為每個樣品和項目都有所不同，所以最終以工程師告知的為準。

3.關于（樣品量）的需求，最好是先咨詢我們的工程師確定，避免不必要的樣品損失。

4.加急試驗周期一般是五個工作日左右，部分樣品有所差異

5.如果對于（細胞內蛋白流式檢測）還有什么疑問，可以咨詢我們的工程師為您一一解答。